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Curriculum Vitae: |
Nata a Verona il 15/05/1981.
Diploma di maturità scientifica nel 2000.
Nel 2003 Laurea in Biotecnologie classe 1, presso l’Università degli studi di Parma. Tesi “Studio del proteoma di foglie di mais “wildtype” e geneticamente modificato mediante elettroforesi bidimensionale e spettrometria di massa MALDI-TOFL“.
Nel 2006 laurea specialistica interfacoltà in Biotecnologie per la Salute (farmaceutiche mediche e veterinarie), classe9/S presso l’ Università degli Studi di Parma. Tesi “Studio sull’efflusso cellulare di colesterolo a sieri di portatori della mutazione ApoA-IMilano”. Nel 2006 Laureato Frequentatore presso il Dipartimento di Scienze Farmacologiche, Biologiche e Chimiche Applicate (Direttore: Profssa M. Impicciatore), Università di Parma.
Da gennaio 2007 a dicembre 2009 Dottorato di Ricerca in Farmacologia e Tossicologia Sperimentali. Da gennaio a dicembre 2009 Visiting Scientist presso l’Hôpital de la Pitié-Salpêtrière, Unità U939,“Dyslipoprotéinémies et athérosclérose” dell’INSERM (Institut de la Santé et de la Recherche Médicale), Parigi (Francia). Da novembre 2009 ad oggi Contrattista presso la Cattedra di Endocrinologia dell’Università degli Studi di Modena e Reggio Emilia.
2010 Dottorato di Ricerca in Tossicologia e Farmacologia Sperimentali. Tesi: Cellule endoteliali e aterosclerosi: studi in vivo e in vitro. Università degli Studi di Parma.
Tecniche conosciute. Utilizzo di modelli animali nello studio di base e nel controllo farmacologico di eventi implicati nella patogenesi dell’aterosclerosi. Manipolazione animali: tecniche di somministrazione farmaci (orale, intraperitoneale), tecniche chirurgiche di base (accesso, perfusione, isolamento organi e liquidi biologici), prelievo di sangue dal plesso retrorbitale; tecniche di breeding (utilizzo tecnologia Cre-LoxP). Colture cellulari: Prelievo e manipolazione di cellule primarie quali: macrofagi peritoneali murini, cellule endoteliali prelevate da cordoni ombelicali umani (HUVEC), cellule endotelial isolate da aorte murine, BMDM (“Bone Marrow Derived Macrophages”). Utilizzo e mantenimento in coltura di linee cellulari quali: FU5AH (epatoma ratto), J774 (macrofagi di topo), THP1 (monociti umani), HEK293 (embrionali umane di rene), HepG2 (epatomi umani), CHO (ovariche di criceto), COS-7 (renali di scimmia), Neuroblastomi umani (IMR-32), topo), Fibroblasti (umani). Tecniche di biochimica e biologia cellulare SDS-Page/ Western blotting, elettroforesi bidimensionale, Real Time PCR, saggi ELISA tecniche radioisotopiche, cromatografiche, TLC; Quantificazione del trasporto inverso del colesterolo in vivo. Immunoistochimica: preparazione delle sezioni di tessuto (inclusione in paraffina, OTC compound; tecniche di fissaggio in formalina, paraformaldeide, ecc.), immunostaining (reazioni ad emissione di fluorescenza e colorazione classica); visualizzazione al microscopio ottico a fluorescenza e confocale laser a scansione. Lipoproteine: Modificazione: acetilazione, ossidazione. Omeostasi cellulare in vitro del colesterolo: valutazione con tecniche radioisotopiche e colorimetriche di: sintesi del colesterolo, esterificazione del colesterolo, idrolisi del colesterolo esterificato, accumulo intracellulare e in membrana di colesterolo, efflusso di colesterolo, efflusso di fosfolipidi, flusso bidirezionale di colesterolo, citotossicità colesterolo-dipendente. Citofluorimetria a flusso. Impiego di anticorpi monoclonali per la caratterizzazione cellulare mediante citofluorimetria a flusso e analisi con i software dedicati FlowJo, Kaluza (Beckman Coulter).
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